1． Fen細胞培養于含10％小牛血清的RPMI-1640培養液中，在25cm2培養瓶中生長到接近匯合。用含0.05％胰蛋白酶，0.02％ EDTA的PBS消化細胞5分鐘，洗滌后，用細胞培養液將細胞配成1×105/ml。

2． 取96孔細胞培養板，每孔加0.1ml細胞懸液，在37℃ 5％ CO2的飽和水汽二氧化碳培 養箱中培養24小時，讓細胞帖壁。每孔加0.1ml效應細胞懸液，效靶比10：1到50：1，繼續培養4小時，讓效應細胞發揮殺傷效應。實驗中，設立只有靶細胞的無殺傷對照和只有 效應細胞的陰性對照，每種處理設3各復孔。

3． 用含2％小牛血清的RPMI-1640培養液洗滌各孔 3次，洗去不粘附的細胞。每孔加 0.1ml含2％小牛血清的RPMI-1640培養液和10μl 5mg/ml的MTT染液，繼續培養3小時。

4． 用PBS洗滌2次，每孔加0.1ml含0.04mol/L HCl的異丙醇，室溫30分鐘，溶解形成的結晶。在570nm波長處，用酶聯檢測儀檢測各孔的光吸收值（OD）。

殺傷活性（％）＝（OD實驗孔－OD陰性對照） /OD無殺傷對照× 100